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ROS1检测失败的原因有哪些?肿瘤医生详解四大关键因素

傅洁 傅洁 主任医师 肺癌 2026年1月15日 2,453 阅读 来源:基因百科

核心观点摘要

ROS1融合是肺癌重要的治疗靶点,但临床检测中可能出现失败或假阴性结果。本文从样本质量、技术局限、生物学特性及人为因素四个维度,深度剖析ROS1检测失败的原因有哪些,为患者和临床医生提供科学的应对思路,助力实现精准治疗。

在非小细胞肺癌的精准治疗时代,ROS1基因融合的检测结果,直接决定了患者能否从对应的靶向药物中获益。然而,临床实践中,并非每一次检测都能顺利给出明确的答案。“检测失败”、“结果不明确”或“假阴性”的报告,时常让患者和医生感到困惑与焦虑。系统性地理解ROS1检测失败的原因有哪些,是跨越这一障碍、确保治疗精准性的第一步。

样本因素:是“巧妇难为无米之炊”,还是“材料本身不合格”?

一切精准检测的基石,是合格的样本。如果把检测比作一次精密的化学实验,那么肿瘤样本就是最核心的原料。原料出了问题,再先进的技术也难有作为。

最常见的问题出在“量”上。通过支气管镜或穿刺获取的活检标本,有时体积非常小,其中包含的肿瘤细胞数量可能低于检测平台所需的最低阈值。比如,一些高通量测序(NGS)平台要求肿瘤细胞含量至少达到20%甚至更高。如果一份标本里混入了大量正常的炎症细胞或间质细胞,肿瘤细胞的DNA比例过低,就可能导致检测信号微弱,无法被有效捕获和分析,最终被判读为“检测失败”。

肺癌组织活检样本与病理切片示意图
肺癌组织活检样本与病理切片示意图

“质”的问题同样关键。肿瘤组织离体后,需要迅速用福尔马林等固定液进行处理,以保存其核酸的完整性。但如果固定不及时,或者固定时间过长,组织中的DNA和RNA会发生降解。ROS1融合的检测,尤其是基于RNA的检测方法(如RT-PCR、部分NGS panel),对RNA的质量极为敏感。降解的RNA就像一本残缺不全的指令书,机器无法读取其中的关键信息(融合位点),自然会导致ROS1检测失败。临床上,我们偶尔会收到来自不同医院的标本,处理规范的与处理随意的,最终的检测成功率确实存在肉眼可见的差异。

技术因素:是“检测方法选择不当”,还是“平台灵敏度不够”?

即便拿到了好样本,选择什么样的“工具”去检测,也直接决定了成败。目前,检测ROS1融合有多种技术,各有优劣,没有一种方法是万能的。

免疫组化(IHC)有时被用作初筛,因为它快速、经济。但它的特异性不够高,染色结果容易受到主观判读影响,可能出现假阳性(不是融合但染色阳性)或更危险的假阴性(是融合但染色阴性)。因此,IHC阳性结果通常需要分子检测方法来确认,而阴性结果绝不能轻易排除ROS1融合的可能性。

FISH、NGS等不同基因检测技术原理对比图
FISH、NGS等不同基因检测技术原理对比图

荧光原位杂交(FISH)是传统的“金标准”,但它主要依赖于设计好的特异性探针去识别断裂的基因。如果患者的ROS1融合伴侣是非常罕见的基因,或者断裂点发生在探针覆盖范围之外,FISH就可能“看不见”这种融合,造成漏检。逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)灵敏度高,但它只能检测已知的、设计好的融合类型,对于全新的、未知的伴侣基因同样无能为力。

近年来广泛应用的下一代测序(NGS),尤其是基于RNA的NGS,在覆盖范围和发现未知融合方面优势明显。但它也受限于panel的设计广度、测序深度以及生信分析的准确性。不同厂家、不同平台的试剂盒,其灵敏度和特异性存在差异。甚至,从样本中提取核酸这一步做得不好,后续的扩增和测序都会成为无源之水。所以,ROS1检测失败的原因有哪些?检测技术本身的局限性和操作流程中的任何细微偏差,都可能位列其中。

生物学与人为因素:是“肿瘤异质性作祟”,还是“环节沟通有疏漏”?

有些导致失败的因素,藏得更深,与肿瘤本身的狡猾特性和医疗流程的复杂性有关。

肿瘤异质性示意图:显示肿块内不同基因型细胞群
肿瘤异质性示意图:显示肿块内不同基因型细胞群

肿瘤异质性是一个巨大的挑战。肺癌不是一个均质的肿块,它内部可能包含多个基因型不同的细胞亚群。穿刺活检,就像在茫茫大海中取一瓢水,如果这一瓢恰好取自没有ROS1融合的细胞群体,那么检测结果就会是阴性,尽管患者体内其他部位可能存在ROS1融合的肿瘤细胞。这就是所谓的“取样误差”。更棘手的是,肿瘤在治疗压力下会进化,最初没有融合的克隆可能增殖,导致再次活检时结果发生变化。

另一个较少被讨论但真实存在的原因是融合类型本身。绝大多数ROS1融合是CD74-ROS1,但还有一小部分患者是与其他罕见基因融合。如果检测方法(特别是FISH和RT-PCR)没有针对这些罕见类型设计探针或引物,结果自然是阴性。这在临床上会给医生造成“患者没有靶点”的误解。

人为和流程因素也不容忽视。一份从临床科室送出的标本,需要经过申请、采集、固定、运输、登记、前处理、检测、分析、报告等多个环节。任何一个环节的信息遗漏(如申请单未明确标注需做ROS1检测)、交接失误或保存不当,都可能导致样本用错、信息错配或样本失效。病理科医生与临床医生的沟通不畅,也可能使得对临界结果的判读失去临床背景的支撑。这些看似低级的错误,恰恰是部分检测失败事件的直接导火索。

面对ROS1检测失败,我们该如何应对?

理清了原因,对策也就清晰了。当面临一次失败的ROS1检测时,消极等待不可取,系统性的再评估才是正解。

首要任务是评估样本的“可再检性”。如果留存的组织蜡块中肿瘤细胞含量尚可,可以考虑换用另一种原理的检测技术进行复测。例如,初次用FISH检测失败或阴性,但临床高度怀疑,可以用基于RNA的NGS进行验证。NGS广覆盖的特性,尤其适合排查罕见融合。

如果原样本已无法使用,获取新的肿瘤样本就成为关键选择。这可以是再次穿刺活检,或者在多学科讨论后,考虑对可及的转移灶进行活检。近年来,液体活检(检测血液中的循环肿瘤DNA)技术日益成熟,为无法再次获取组织样本的患者提供了宝贵的补充手段。虽然其对于融合变异的检测灵敏度通常低于组织检测,但对于监测耐药、发现新克隆具有独特价值,有时也能在组织检测失败后提供关键线索。

整个过程必须依托于紧密的多学科协作。临床医生提供详细的病史和治疗情况,影像科医生精准定位可活检的病灶,病理科医生精心处理和分析样本,分子病理专家选择合适的检测平台并解读复杂的报告。只有团队无缝合作,才能为患者编织一张精准的检测安全网。

展望未来,检测技术必将更加灵敏、全面和便捷。但无论技术如何进步,对检测失败原因的深刻理解,以及对高质量样本的追求,永远是精准医疗的基石。每一次对失败原因的追溯,不仅是为了给当前的患者找到答案,也是在推动整个诊疗体系的优化。最终目标是让每一位带有ROS1融合的肺癌患者,都不再因为检测的障碍,而错过本该有效的治疗机会。

傅洁
傅洁 主任医师
🏥 华中科技大学同济医学院附属同济医院 · 肿瘤外科

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